Przygotuj wszystko, czego potrzebujesz do oznaczania grupy krwi. Technika oznaczania grupy krwi układu AB0 przy użyciu standardowych surowic. Pielęgnacja centralnego cewnika żylnego

Oznaczanie grup krwi za pomocą koliklonów przeprowadza się w reakcji aglutynacji. Tsoliclony to roztwory soli fizjologicznej przeciwciał monoklonalnych do wykrywania antygenów ludzkich erytrocytów. Każdy odczynnik jest ściśle specyficzny dla odpowiedniego antygenu. Monoklonalne przeciwciała przeciwko erytrocytom są wytwarzane przez hybrydomy myszy lub heterohybrydomy człowieka i myszy.

Metodologia analizy

Algorytm oznaczania grupy krwi AB0 i czynnika Rh przez kolki ułatwia i ujednolica procedurę typowania. Pozwala na jednoznaczną interpretację wyniku reakcji antygen/przeciwciało. Do każdego badania w systemie AB0 wystarczy jedna partia odczynników. Przedmiotem badania jest krew pełna, masa erytrocytów, przemyte erytrocyty, krwinki w surowicy lub soli fizjologicznej. Jako przykład podajemy schemat typowania ludzkiej krwi według układu antygenów AB0.

1. Zapewnij jasne oświetlenie pomieszczenia i temperaturę powietrza 15–25°C.
2. Oznacz dołki płytki: Anty-A, Anty-B, Anty-AB.
3. Dodać jedną kroplę (około 0,1 ml) odczynników Anty-A, Anty-B, Anty-AB do podpisanych dołków.
4. Umieść jedną małą kroplę stężonego podłoża RBC (0,01 - 0,03 ml) obok dużej kropli każdego odczynnika.
5. W każdym z trzech dołków zmieszać odczynnik monoklonalny z krwią za pomocą osobnego, sterylnego szklanego pręta.
6. Delikatnie potrząsać tabletką przez 2,5 – 3 minuty. Zwykle aglutynacja powstaje w ciągu 5 - 10 sekund. Do wykrycia słabych wariantów antygenów potrzebny jest margines czasu.
7. Przeprowadzić wizualną ocenę wyników reakcji w każdym dołku. Wynik reakcji wskazuje na wykrycie odpowiedniego aglutynogenu.

Pobranie próbki krwi

Wkładanie próbki do studzienki

Tablet z wprowadzonymi próbkami

Dodawanie odczynników

Tabletka z erytrocytami i odczynnikami

Wyniki reakcji

Tabela wyników oznaczania grupy krwi przy użyciu koliklonów.

«+» - wynik pozytywny reakcje;
„-” - brak aglutynacji.

• Ujemny wynik reakcji we wszystkich trzech dołkach wskazuje na brak aglutynogenów. Grupa: 0(I).
• Aglutynacja z Anty-A i Anty-AB wskazuje na obecność aglutynogenu A. Przynależność do grupy: A(II).
• Reakcja w dołkach z Anty-B i Anty-AB wskazuje na obecność antygenu B. Przynależność do grupy: B(III).
• Reakcja we wszystkich trzech dołkach wskazuje na obecność obu antygenów. Grupa: AB(IV).

Mieszanie analizowanych próbek z kolklonami

Istnieją dwa sposoby określania grup krwi:

• przy użyciu surowic standardowych, po ustaleniu obecności lub braku antygenów A i B w erytrocytach, czyli w jaki sposób określa się grupy krwi u biorców;
• za pomocą standardowych surowic oznacza się antygeny w erytrocytach i jednocześnie za pomocą standardowych erytrocytów bada się surowicę krwi (osocze) na obecność w niej izoaglutynin tataraku (metoda krzyżowa).

Sprzęt do oznaczania krwi

Sprzęt do oznaczania grup krwi:

2 - roztwór fizjologiczny;

3 - szklanka do mycia wody;

4 - woda do mycia pipet i pałeczek;

7 - pięciominutowa klepsydra;

8 - stojak ze standardowymi surowicami;

9 - szpatułka do oczu do mieszania kropli;

„Seminaria na temat transfuzji krwi”,

L.V. Iwanow, I.P. Daniłow, B.A. Szuwajewa

Przed zastosowaniem jakichkolwiek porad należy skonsultować się z lekarzem.

Zasady określania grupy krwi za pomocą tsoliklonów

Bardzo często grupę krwi wykonuje się za pomocą kolklonów. Tsoliklony dzielą się na anty-A i anty-B. Ich zastosowanie w medycynie jest popularne ze względu na możliwość oznaczania nie tylko grup krwi. Pokazują także Rhesusa. Wykorzystuje się do tego system ABO, który zastępuje konwencjonalne surowice, których podstawą jest izogem aglutynujący.

Aby określić grupę lub Rh, odczynniki wyszukują powyższe antygeny obecne w czerwonych krwinkach. W tym celu stosuje się przeciwciała typu standardowego. Aglutyny wykrywa się również za pomocą standardowych erytrocytów, niezależnie od tego, czy do badań wykorzystuje się osocze, czy specjalną surowicę. W przypadku analizy próbek dawców obowiązkowe jest również oznaczenie obecności aglutynin w surowicy. W tym celu stosuje się erytrocyty standardowego typu.

Jako podstawę do koleklonów wykorzystuje się linie komórkowe hybrydom. Otrzymuje się je poprzez połączenie limfocytów B tworzących przeciwciała pochodzenia mysiego z komórkami szpiczaka tego samego żywego organizmu. Za pomocą hybrydom, które są indywidualne, wytwarzane są przeciwciała jednorodnego typu. W takim przypadku może powstać tylko jedna klasa immunoglobulin. Substancje te prawie całkowicie powtarzają strukturę i działanie punkt biologiczny wizja.

Przygotowanie do pracy

Aby określić grupę krwi i rezus w przypadku koliklonów, istnieje specjalny algorytm. Ta technika pracy polega na oznaczaniu laboratoryjnym. W laboratorium należy utrzymywać określone wskaźniki temperatury - w zakresie od 15 do 25 stopni Celsjusza. Ponadto wymagane jest dobre oświetlenie.

Wszystkie odczynniki przechowywane są w szczelnie zamkniętych fiolkach. Jest to konieczne, aby zapobiec wysuszeniu. W wyniku tego procesu aktywność przeciwciał może zostać poważnie obniżona.

Do pracy zabrania się stosowania odczynników mętnych z obecnością płatków. Do pracy używana jest indywidualna pipeta. Procedura polega na użyciu barwionej płytki biały kolor dobrze zwilżoną powierzchnię. Ze względu na takie czynniki jak wysoka awidność i aktywność zolikonów, do użycia wystarczy jedna partia odczynnika.

Aby wykonać badanie grupy krwi, należy najpierw przygotować cały sprzęt i odczynniki. W szczególności:

• przygotowywana jest typowa płyta, sucha, na niej zostanie przeprowadzona cała analiza;
• przygotowywane są oba rodzaje tsoliclonów, a także dwie pipety do pracy z każdą z osobna i dwie szklane pałeczki, które służą do mieszania;
• będziesz potrzebować jednorazowej strzykawki z igłą, która służy do pobierania krwi.

Na wysterylizowanej tacy układane są trzy kulki, które są wstępnie zwilżone alkoholem, a także trzy sterylne chusteczki. Do ogrodzenia potrzebna będzie gumka. Zbieranie odbywa się w probówce typu wirówkowego bez użycia cieczy. Na nim za pomocą glassografu należy wyraźnie wpisać imię i nazwisko pacjenta. Dodatkowo wypełniany jest formularz, który pełni funkcję skierowania do laboratorium. Lekarz laboratoryjny ponownie określi wszystkie główne wskaźniki i złoży pieczęć i podpis.

Definicja wyników

Aby uzyskać prawidłowy wynik analizy, należy wykonać nakłucie dożylne zgodnie ze wszystkimi zasadami pobierania próbek. Wystarczy określić pięć mililitrów.

Zolikony anty-A i anty-B nanosi się na płytki w laboratorium. To zajmie jedną dużą kroplę. Każdy z nich jest oznaczony odpowiednimi napisami. Obok nich należy nałożyć niewielką ilość kropli krwi.

Do mieszania próbki i odczynników stosuje się pojedynczy szklany pręt. Stosunek krwi do odczynników powinien wynosić od jednego do dziesięciu. Do obserwacji reakcji wystarczy dwie i pół minuty.

Wystarczy pięć minut mieszania kropli, aby zaobserwować wynik. Musi to ocenić lekarz. Poniższa tabela zawiera wyniki, którymi należy się kierować podczas pracy z surowicą przy stosowaniu standardowych krwinek czerwonych.

Jeżeli u noworodków oznaczona zostanie grupa krwi AB w celu wykluczenia autoaglutynacji, wymagane jest badanie kontrolne. W tym celu jedną kroplę izotonicznego roztworu chlorku sodu miesza się w powyższej proporcji z krwią przesłaną do badań. Jeśli nie ma reakcji aglutynacji, krew naprawdę odpowiada grupie AB.

Aby określić współczynnik Rh, algorytm przygotowania jest taki sam. Po przygotowaniu wszystkich elementów do określenia współczynnika Rh przeprowadza się badanie.

Wymaga to nałożenia na płytkę dużej kropli odczynnika anty-D-super. W pobliżu, w proporcji od jednego do dziesięciu, nakłada się kroplę krwi przesłanej do badań. Za pomocą indywidualnego urządzenia miesza się odczynnik i krew, a następnie ocenia się wynik.

Jeśli rozpoczął się proces aglutynacji, wówczas krew ma dodatni współczynnik Rh, jeśli proces się nie rozpocznie, odpowiednio mówimy o ujemnym współczynniku Rh. Warto podkreślić, że odczynniki monoklonalne mają pewną przewagę nad standardowymi surowicami. W szczególności wynik w tym przypadku jest znacznie dokładniejszy, a sam zabieg jest bezpieczniejszy, bezbolesny i nie zajmuje dużo czasu.

Kompilacja zestawów i określenie przynależności grupowej i współczynnika Rh krwi

Oznaczanie grupy krwi na obecność kolklonów anty-A i anty-B

1. Przygotuj płytkę, solikliny, szklane pałeczki, obejrzyj, zbadaj krew

1. Podziel płytkę za pomocą pisaka na 2 części

1. Na płytkę nałóż po jednej kropli zoliklonu anty-A i anty-B

1. Na talerzu umieść jedną kroplę krwi (obok kropli tsoliklonu), każda z nich jest 10 razy mniejsza od kropli tsoliklonu

1. Mieszaj różnymi końcami szklanych prętów

1. Wstrząsaj przez 2,5 minuty

brak aglutynacji - 1 grupa krwi

aglutynacja w grupie krwi anty-A-2

aglutynacja w grupie krwi anty-B - 3

aglutynacja w obu kroplach - 4 grupa krwi

1. Przygotuj probówki, pipety, roztwór soli fizjologicznej (0,9% roztwór chlorku sodu), uniwersalny odczynnik antyrezusowy, krew testową

1. Nałóż na ściankę probówki kroplę uniwersalnego odczynnika antyrezusowego i kroplę krwi jednakowej wielkości

1. Wstrząsaj przez 3 minuty

1. Dodaj 3 ml. solankowy

Obecność aglutynacji - badana krew jest Rh-dodatnia

Brak aglutynacji – badana krew jest Rh-ujemna

Kompilacja zestawów i badanie indywidualnej zgodności krwi dawcy i biorcy

Test zgodności ABO (według grupy krwi)

1. Przygotuj płytkę, krew dawcy w fiolce, surowicę biorcy w probówce, zegarek i szklane pałeczki

1. Na płytkę nałóż kroplę surowicy biorcy i kroplę krwi dawcy z fiolki

1. Wymieszać szklanymi pałeczkami i wstrząsać przez 5 minut

Obecność aglutynacji - krew jest niezgodna z ABO

Brak aglutynacji – krew jest zgodna z ABO

Sprawdź zgodność za pomocą współczynnika Rh

1. Przygotuj krew dawcy w fiolce, surowicę biorcy w probówce, probówkę, pipety, roztwór poligyukiny (33%)

1. Do probówki 2 krople krwi dawcy, 1 kropla krwi biorcy i 1 kropla roztworu poliglucyny (33%)

1. Wstrząsaj przez 5 minut

1. Dodać roztwór soli (2-3 ml)

Obecność aglutynacji - krew jest niezgodna z czynnikiem Rh

Brak aglutynacji – krew jest zgodna z czynnikiem Rh

Zestawienie zestawów narzędzi do wenesekcji i cewnikowania żyły podobojczykowej

1. Przygotuj sterylne kulki z gazy na sterylnej tacy, pęsety anatomiczne, do obróbki pola operacyjnego; strzykawka z roztworem nowokainy do znieczulenia miejscowego (0,25%); 2 sterylne ligatury; 1 sterylny cewnik i sterylny skalpel; sterylny uchwyt na igłę z igłą i materiałem do szycia

1. Zapytaj pacjenta o tolerancję nowokainy

1. Operację przeprowadza się w znieczuleniu miejscowym w okolicy żyły zgięcia łokciowego (operacyjnie usuwa się żyłę, zakłada się 2 podwiązki pod żyłę, obwodowy odcinek żyły podwiązuje się 1-szą podwiązką, żyłę podwiązuje się nacina się i wprowadza cewnik, który mocuje się podwiązaniem; ranę zaszywa się; do elastycznego cewnika przymocowuje się system do transfuzji krwi)

Zestaw do cewnikowania żyły podobojczykowej

1. zabieg antyseptyczny na skórę, sterylne kulki z gazy na sterylnej tacy

2. do znieczulenia strzykawka z nowokainą 0,5% 10 ml

3. jednorazowy cewnik do żyły podobojczykowej

Podczas obchodzenia się z krwią należy nosić rękawice i inny sprzęt ochrony osobistej

Przed pracą z krwią

1. Załóż okulary, maskę

1. Leczyć dłonie chirurgicznie

1. Załóż sterylne rękawiczki

Jeżeli rękawiczki miały kontakt z mediami biologicznymi jednego pacjenta, niedopuszczalne jest dotykanie skóry (rany) innego pacjenta lub dokonywanie jakichkolwiek inwazyjnych manipulacji na innym pacjencie!

Po pracy z krwią

1. Zanurz rękawiczki w roztworze środka dezynfekującego na 1 godzinę

1. Włóż do specjalnego worka (żółty worek, grupa B)

1. Wyślij do recyklingu

Trzymać terapia infuzyjna do żyły centralnej

1. Przygotować sterylną tacę zawierającą sterylną strzykawkę, opatrunki, sterylny system do wprowadzania sterylnych roztworów, dwie fiolki alkoholu, pęsety, statyw, 10% izotoniczny roztwór chlorku sodu, roztwór heparyny.

2.Napełnij system kroplowy roztworami sterylnymi.

3. Weź sterylną strzykawkę, pobierz 5 ml izotonicznego roztworu chlorku sodu (do przemycia cewnika).

4. Poproś pacjenta, aby odwrócił głowę w stronę przeciwną do cewnika podobojczykowego i wstrzymał oddech.

5.Usunąć zatyczkę cewnika podobojczykowego.

6. Opuść zakrętkę na fiolkę z alkoholem.

7. Podłączyć kaniulę sterylnej strzykawki do cewnika podobojczykowego, pozwolić pacjentowi oddychać.

8. Sprawdź obecność cewnika podobojczykowego w żyle (pociągnij tłok strzykawki do siebie), wstrzyknij 2 ml izotonicznego roztworu chlorku sodu, gdy pojawi się krew.

9. Poproś pacjenta, aby wstrzymał oddech.

10. Odłączyć strzykawkę i wprowadzić kaniulę zakraplacza do cewnika podobojczykowego.

12.Dostosuj określoną liczbę kropli.

13. Zamknąć blokadę zakraplacza po zakończeniu wstrzykiwania sterylnego roztworu do cewnika podobojczykowego.

14. Poproś pacjenta, aby odwrócił głowę w stronę przeciwną do cewnika podobojczykowego i wstrzymał oddech.

15. Wyjmij kaniulę zakraplacza.

16. Do cewnika podobojczykowego wprowadzić 0,2 ml heparyny z 2 ml izotonicznego roztworu chlorku sodu, aby zapobiec tworzeniu się skrzepów krwi (na koniec wlewu – blokada heparynowy).

17. Zamknąć wejście do cewnika podobojczykowego korkiem, wyciągając go pęsetą z fiolki z alkoholem. Kontynuuj oddychanie.

UWAGA: W przypadku długotrwałego dożylnego podawania jałowych roztworów należy okresowo sprawdzać obecność cewnika podobojczykowego w żyle pod kontrolą RTG.

Pielęgnacja centralnego cewnika żylnego

1. Potraktuj skórę wokół cewnika roztworem alkoholu (70 stopni), roztworem zieleni brylantowej (1%)

1. Sprawdź, czy nie ma załamań, gęstość gumowego korka

1. Sprawdź drożność cewnika: podłącz strzykawkę z 20 ml. roztworem soli fizjologicznej, poproś pacjenta, aby na wdechu wstrzymał oddech, pociągnij tłok, a krew powinna swobodnie dostać się do strzykawki

1. Zmieniaj system infuzyjny wyłącznie po wdechu

1. Po każdej infuzji wstrzyknąć 5000 jednostek heparyny i szczelnie zakorkować

44. Zakładanie i usuwanie przerwanego szwu Zakładanie i usuwanie przerwanego szwu

1) Zapytaj pacjenta o tolerancję leku

2) Przygotuj kleszcze anatomiczne, chirurgiczne, uchwyt igły z igłą, jedwab, nożyczki na sterylnej tacy

3) Potraktuj skórę roztworem antyseptycznym (jodonianem) za pomocą pęsety anatomicznej

4) Chwyć brzeg rany pęsetą chirurgiczną

5) Wykonaj zastrzyk, cofając się o 0,5 cm od krawędzi rany

6) Przeciwległa krawędź rany jest zszyta naprzeciwko poprzedniej (cofanie się o 0,5 cm)

7) Zawiązać węzły po jednej stronie rany

9) Następny szew w odległości 1 cm

1) Nasmaruj ranę roztworem jodonianu

2) Chwyć węzeł pęsetą anatomiczną i pociągnij w kierunku blizny (nie od blizny i nie do góry, ponieważ młoda, delikatna blizna może się rozproszyć)

3) Ze skóry wyłania się biała, niebarwiona nić; go przekroczyć

Usuń nić z kanału szwu

4) Jeżeli pojawi się kropla krwi, ropy lub limfy – poinformuj o tym lekarza, gdyż. to zapalenie

Bandażowanie pacjentów z czystymi i ropnymi ranami

1. Załóż sterylne rękawiczki

1. Przed zdjęciem opatrunku (zaschniętego do rany) przepłukać opatrunek roztworem nadtlenku wodoru (3%)

1. Ostrożnie zdejmij bandaż

1. Przemyć ranę roztworem nadtlenku wodoru (3%) (ma właściwości antyseptyczne o szerokim działaniu, m.in. niszczy Clostridia i grzyby, likwiduje nieprzyjemny zapach z rany i tamuje krwawienie)

1. Nałóż serwetkę zwilżoną roztworem furacyliny (1:5000)

1. Załóż sterylny bandaż

Procedura jest taka sama. Ranę prowadzi się zgodnie z zasadą 3 faz procesu rany: nawilżenia, odwodnienia i nabłonka.

1. W fazie nawodnienia (w ranie występuje dużo ropy i wyraźny obrzęk tkanek miękkich)

Opatrunki stosuje się z maściami na bazie wody (disole ze środkami antyseptycznymi), enzymami (trypsyna, chymotrypsyna, pepsyna); leczenie fizykalne jest przeciwwskazane

2. W fazie odwodnienia (mała ropa, obrzęk ustępuje)

Stosuje się maści na bazie oleju. Opatrunki można wykonywać rzadziej (1 raz na 2-3 dni). Fizjoterapia jest możliwa.

3. W fazie nabłonka (zakończone gojenie rany)

Ogólnie stosuje się immunokorektę, detoksykację i stymulację procesów naprawczych w ranie.

Ćwicząca rana toaletowa

Toaletę rany przeprowadza się za pomocą świeżych ran (płytkich, w grubości skóry, która na pierwszy rzut oka nie pozostawi szorstkiej blizny). W pozostałych przypadkach wykonuje się PST rany.

1. Przygotować sterylny materiał opatrunkowy (serwetki, turundy, kulki), pęsetę anatomiczną lub zacisk Billroth, gazę lub dreny z gazy gumowej na sterylnej tacy

1. Załóż sterylne rękawiczki

1. Przemyć ranę roztworem nadtlenku wodoru (3%) (ma właściwości antyseptyczne o szerokim spektrum działania, m.in. niszczy Clostridia i grzyby; likwiduje nieprzyjemny zapach z rany i tamuje krwawienie) lub roztworem furacyliny (1:5000)

1. Potraktuj brzegi rany roztworem alkoholu (70 stopni), nasmaruj roztworem jaskrawej zieleni (1%)

1. Nałożyć sterylny bandaż lub uszczelnić klejem BF-6

Nie znalazłeś tego, czego szukałeś? Skorzystaj z wyszukiwarki Google na stronie:

Sprzęt do oznaczania krwi

i ginekologii młodzieżowej

i medycyny opartej na faktach

i pracownik służby zdrowia

Oznaczanie grupy krwi i czynnika Rh

Algorytm postępowania przy określaniu grupy krwi i współczynnika Rh

kiedy kobieta trafia do szpitala położniczego

Oznaczanie grupy krwi układu AB0 za pomocą przeciwciał monoklonalnych

Przygotowywać:

• suche szkiełko (typowa płytka) do oznaczania grupy krwi;
• kolki anty-A (różowe) i anty-B (niebieskie);
• dwie pipety do pobierania tsoliclonów z fiolek;
• dwa szklane patyczki do mieszania krwi pacjenta z kolkami;
• jednorazowa strzykawka (5-10 ml) z igłą do pobierania krwi z żyły pacjenta;
• umieść 3 kulki zwilżone alkoholem, 2-3 sterylne chusteczki na sterylnej tacy;
• gumowa opaska uciskowa do nakłuć dożylnych;
• sucha probówka wirówkowa, na której imię i nazwisko pacjenta jest wyraźnie podpisane przez szklarza;
• formularz – skierowanie do laboratorium, gdzie lekarz – asystent laboratoryjny ponownie określa grupę krwi, przynależność Rh, pieczątki i podpisy

Przestrzegając wszystkich zasad nakłuć dożylnych, należy pobrać krew z żyły pacjenta (co najmniej 5 ml).

• Zolikony anty-A i anty-B nanosi się na tabletkę lub płytkę po jednej dużej kropli (0,1) każda pod odpowiednimi napisami: anty-A i anty-B.
• Obok kropli przeciwciał, krwi testowej nanosi się jedną małą kroplę (0,01 ml).
• Po zmieszaniu odczynników i krwi z różnymi pałeczkami szklanymi dla anty-A i anty-B w stosunku 1:10, reakcję aglutynacji obserwowano przez 2,5 minuty.
• Odczytanie wyników po 5 minutach podczas mieszania kropli. (od 3 do 5 minut)
• Wynik ocenia lekarz. Ocenę wyników reakcji aglutynacji z zoliklonami anty-A i anty-B przedstawiono w tabeli, która zawiera także wyniki oznaczeń aglutynin w surowicy (osoczu) dawców przy użyciu standardowych erytrocytów.

Aby wykluczyć autoaglutynację, którą można zaobserwować we krwi pępowinowej noworodków, w przypadku ustalenia grupy krwi AB (IV) należy przeprowadzić badanie kontrolne: zmieszać jedną kroplę (0,1 ml) izotonicznego roztworu chlorku sodu niewielką kroplą (0,01 ml) badanej krwi. Reakcja aglutynacji powinna być NIEOBECNA.

A. Dokładnie wypełnij wszystkie kolumny formularza - skierowanie do laboratorium w celu określenia grupy krwi i przynależności Rh z podpisem lekarza.

C. Dostarcz skierowanie i probówkę z krwią pacjenta do laboratorium w celu dokładnego określenia grupy krwi pacjenta i przynależności Rh.

Oznaczanie współczynnika Rh odczynnikiem monoklonalnym (Zoliklon anty-D Super)

Na płytkę nanosi się dużą kroplę odczynnika (około 0,1 ml). W pobliżu umieszcza się niewielką kroplę (0,01-0,05 ml) krwi testowej i miesza się ją z odczynnikiem. Reakcja aglutynacji zaczyna się rozwijać w ciągu sekundy, wyraźnie wyrażona aglutynacja następuje w ciągu sekundy. (Rh dodatni, brak aglutynacji - Rh ujemny). Wyniki reakcji uwzględnia się po 3 minutach.

Po zmieszaniu odczynnika z krwią zaleca się potrząsać płytką nie od razu, ale co sekundę, co pozwoli na rozwinięcie się w tym czasie pełniejszej aglutynacji dużych płatków.

Ekspresowe oznaczanie grup krwi ABO i Rhesus przy użyciu zestawu Erythrotest-Groupcard

Zestaw „Erythrotest-Groupcard” (LLC „Gematologist”, Moskwa) przeznaczony jest do oznaczania grup krwi ludzkiej ABO i RhD (RhD) w warunkach laboratoryjnych i warunki terenowe. Oznaczenie przeprowadza się w reakcji bezpośredniej hemaglutynacji i nie wymaga żadnych dodatkowych odczynników ani sprzętu. Zestaw zawiera:

• karta „Karta grupowa Erythrotest”;
• pipetować z dozowaną objętością kropli około 0,02 ml;
• sterylnie zapakowany wertykulator;
• sztyft do mieszania krwi z odczynnikiem.

Dołki karty zawierają wysuszone odczynniki monoklonalne anty-A, anty-B, anty-AB i anty-D, które po dodaniu wody natychmiast się rozpuszczają. Przeciwciała monoklonalne anty-D specyficznie wykrywają antygen RhD niezależnie od grupy ABO. Ostatni dołek zawiera rozpuszczalnik do kontroli nieswoistej autoaglutynacji.

Oznaczenie wykonuje się w krwi natywnej z konserwantem, we krwi bez konserwantu lub krwi pobranej z palca.

• Otwórz opakowanie i wyjmij kartę, nie dotykając otworów powierzchnią roboczą. Wprowadź dane pacjenta, z wyjątkiem grupy krwi.
• Dodaj 1 kroplę wody (kranowej lub destylowanej) do każdego dołka za pomocą pipety dołączonej do zestawu. Na plamę wysuszonego odczynnika nanosi się wodę. Nie dopuścić do wyschnięcia kropli.
• Do każdego dołka dodaje się małą kroplę krwi testowej. Krew nanosi się obok kropli odczynnika, bez jej dotykania, aby uniknąć zanieczyszczenia jednego odczynnika drugim. Do pobrania krwi z palca służy sterylny wertykulator.
• Dokładnie wymieszaj krew z odczynnikiem za pomocą dołączonego do zestawu patyczka. W każdym dołku mieszanie odbywa się tylko za pomocą nowego sztyftu. Niedopuszczalne jest stosowanie jednego mieszadła w różnych dołkach, gdyż prowadzi to do skażenia odczynników i błędnego oznaczenia grupy krwi.
• Natychmiast potrząśnij talerzem. Wyraźna aglutynacja następuje w ciągu kilku sekund, ale ostateczny wynik należy brać pod uwagę po 3 minutach, ponieważ. w przypadku słabych form antygenu A reakcja zachodzi później, a aglutynaty są mniejsze.
• Wynik ocenia się wizualnie (tabela 18.6). W kwadraty pod każdą studzienką wpisz wynik reakcji z odpowiednim odczynnikiem (+ lub -).

Okres ważności zestawu „Erythrotest-groupcard” – 2 lata w temperaturze 2-8°C. Dopuszczalne jest przechowywanie przez 1 rok bez lodówki, jeśli temperatura nie przekracza 25°C. Niedozwolone jest przechowywanie i używanie nieuszczelnionych lub uszkodzonych opakowań.

Notatka! Diagnoza i leczenie nie są przeprowadzane wirtualnie! Omawiane są jedynie możliwe sposoby zachowania zdrowia.

Koszt 1 godziny (od 02:00 do 16:00 czasu moskiewskiego)

Od 16:00 do 02:00/godz.

Prawdziwy odbiór doradczy jest ograniczony.

Pacjenci wcześniej zgłoszeni mogą mnie odnaleźć po znanych im szczegółach.

notatki na marginesie

Kliknij na zdjęcie -

Prosimy o zgłaszanie uszkodzonych linków do stron zewnętrznych, w tym linków, które nie prowadzą bezpośrednio do pożądany materiał, prosząc o płatność, żądając podania danych osobowych itp. Aby zwiększyć efektywność, możesz to zrobić za pomocą formularza opinii znajdującego się na każdej stronie.

Trzeci tom ICD pozostał niezdigitalizowany. Chętni do pomocy mogą zadeklarować to na naszym forum

Na stronie jest obecnie przygotowywana pełna wersja HTML ICD-10 - Międzynarodowa Klasyfikacja Chorób, wydanie 10.

Chętni do udziału mogą zgłosić to na naszym forum

Powiadomienia o zmianach na stronie można otrzymywać za pośrednictwem sekcji forum „Kompas zdrowia” - Biblioteka strony „Wyspa zdrowia”

Wybrany tekst zostanie przesłany do redaktora serwisu.

nie powinny być wykorzystywane do samodiagnostyki i leczenia i nie mogą zastępować osobistej porady lekarskiej.

Administracja serwisu nie ponosi odpowiedzialności za wyniki uzyskane podczas samodzielnego leczenia przy użyciu materiałów referencyjnych serwisu

Przedruk materiałów serwisu jest dozwolony pod warunkiem umieszczenia aktywnego linku do materiału oryginalnego.

Prawa autorskie © 2008 Blizzard. Wszelkie prawa zastrzeżone i chronione przez prawo.

Technika oznaczania grupy krwi układu AB0 za pomocą surowic standardowych

Wskazania: konieczność przetoczenia krwi, przygotowanie do zabiegu operacyjnego.

Przygotuj: standardową płytkę z wgłębieniami; zestaw szklanych patyczków; izotoniczny roztwór chlorku sodu; zestaw surowic hemaglutynujących 1, 2, 3, 4 grupy po dwie serie; pipety; krew pobrana z żyły lub palca; oglądać; tace; rękawice; pojemniki na odpady; pojemniki z roztworami dezynfekcyjnymi.

1. Pielęgniarka jest w pełni przygotowana do wykonania zabiegu: ubrana w garnitur (suknię), maskę, rękawiczki, czepek, zdejmowane buty.
2. Sprawdź jakość standardowych surowic hemaglutynujących poprzez: oznaczenie kolorem, wygląd(jasny, przezroczysty); bezpieczeństwo opakowania, obecność odpowiednio zaprojektowanej etykiety.
3. Przygotuj wszystko, czego potrzebujesz do wykonania manipulacji.

Na białą płytkę, zgodnie z oznaczeniem, nakładać kolejno po jednej kropli serum 1, 2, 3 grupy po dwie serie. Każdą pipetę należy natychmiast opuścić do tej samej ampułki (fiolki), z której została pobrana;

Za pomocą szklanego pręta nałóż kroplę krwi testowej obok wgłębień (6 wgłębień). Kropla krwi powinna być 10 razy mniejsza niż kropla surowicy;

Zaznaczyć czas i wymieszać krew z surowicą 1 g czystą, suchą pałką szklaną, następnie 2 g drugim patyczkiem. itp. we wszystkich wnękach;

W przypadku wystąpienia aglutynacji, ale nie wcześniej niż po 3 minutach, do tych kropli, w których zachodzi reakcja aglutynacji, należy dodać jedną kroplę izotonicznego roztworu chlorku sodu, aby wykluczyć fałszywą aglutynację i kontynuować monitorowanie przez 5 minut.

a) przy reakcji dodatniej w mieszaninie pojawiają się najmniejsze widoczne gołym okiem ziarenka, składające się ze sklejonych ze sobą erytrocytów. Małe ziarna łączą się w duże ziarna, a czasami w płatki, podczas gdy serwatka ulega odbarwieniu;

b) kiedy reakcja płyn pozostaje równomiernie zabarwiony na różowo;

c) Możliwe są 4 kombinacje reakcji pozytywnych i negatywnych:

1. Jeżeli w żadnej z komórek nie ma aglutynacji, to krew należy do grupy I (0).

2. Jeśli aglutynacja występuje w pierwszej i trzeciej komórce, wówczas krew należy do grupy II (A).

3. Jeśli aglutynacja występuje w pierwszej i drugiej grupie, to krew grupy III (B).

4. Jeśli aglutynacja zachodzi w pierwszej, drugiej, trzeciej komórce, to krew grupy IV (AB).

Aby wyeliminować błędy, krew sprawdza się za pomocą surowicy grupy 4, w której nie powinno być aglutynacji.

1. Zdjąć rękawiczki, umieścić je w roztworze dezynfekującym.
2. Umyć ręce, osuszyć ręcznikiem.

Uwaga: oznaczanie grupy krwi przeprowadza się w pomieszczeniu o dobrym oświetleniu w temperaturze 15–25 0 С.

Przygotuj sprzęt do oznaczania grupy krwi i współczynnika Rh;

KARMIENIE PACJENTA PRZEZ SONDĘ

PRZYGOTUJ: sterylną cienką sondę żołądkową, glicerynę, lejek o pojemności 200 ml, płynny ciepły pokarm w ilości 3-4 szklanek (rosół, śmietana, sok), szklankę ciepłej wody, bandaż.

1. Zaproś lekarza.

2. Oczyść przewody nosowe pacjenta.

3. Końcówkę sondy zwilżyć gliceryną, przechylić głowę pacjenta lekko do przodu, pomóc lekarzowi wprowadzić sondę przez kanał nosowy i przełyk, a następnie do żołądka.

4. Podłącz koniec sondy do lejka.

5. Powoli wlewaj do lejka przygotowaną żywność małymi porcjami, a następnie przegotowaną wodę.

6. Wyjmij lejek, opłucz.

7. Wzmocnij zewnętrzny koniec sondy sondą wprowadzoną przez gastroma, używaj tego samego pokarmu, ale w małych porcjach (50 ml 8 razy dziennie, stopniowo zwiększając do 500 ml na karmienie).

1) Zbadaj krawędzie otworu przetokowego.

2) Wykonaj toaletę wokół skóry przetoki (leczyć alkoholem, nasmarować pastą Lassar).

3) Przymocuj sondę za pomocą plastra na skórze brzucha.

4) Założyć suchy, sterylny opatrunek.

Sprzęt do oznaczania grupy krwi: surowice wzorcowe hemaglutynujące 1,2,3,4 grupy dwóch różnych serii, izotoniczny roztwór chlorku sodu, pipety – 7 sztuk, szklane pręciki – 7 sztuk, wertykulator, klepsydra, wata, alkohol, płytka, rękawiczki gumowe, pojemnik ze środkiem dezynfekującym.

Sprzęt do oznaczania czynnika Rh: probówka, izotoniczny roztwór chlorku sodu, surowica anty-Rh, pipety - 2 szt., pojemnik z roztworem dezynfekcyjnym.

Order FMBA Rosji

z dnia 30.03.2007 nr 88

FEDERALNA AGENCJA MEDYCZNO-BIOLOGICZNA

Zestawienie zestawu i oznaczenie grupy krwi na podstawie surowic wzorcowych

Identyfikacja oznak niezdatności krwi do transfuzji.

Wskazania: określenie przydatności krwi do transfuzji.

Wyposażenie: fiolka lub pojemnik z krwią.

1. Oceń szczelność paczki:

Opakowanie musi być absolutnie kompletne;

Niedopuszczalne są żadne ślady naruszenia integralności, jeżeli występują, krew nie nadaje się do transfuzji.

2. Oceń prawidłowość certyfikacji:

- obecność etykiety z numerem;

- oznaczenie grupy krwi i przynależności Rh;

· - nazwisko i inicjały darczyńcy;

· - nazwa instytucji-producenta;

· - pieczątka informująca o badaniu na obecność wirusa HIV i wirusowego zapalenia wątroby.

3. Zwróć uwagę na datę ważności krwi, porównaj ją z datą transfuzji, wizualnie oceń krew w fiolce:

Krew należy podzielić na trzy warstwy (poniżej - czerwone erytrocyty, powyżej - wąski szary pasek leukocytów i płytek krwi, powyżej - żółte przezroczyste osocze);

Plazma musi być przezroczysta;

Płatki, błony, skrzepy w osoczu wskazują na infekcję i nienadające się do transfuzji;

· różowe zabarwienie osocze wskazuje na hemolizę czerwonych krwinek i nieprzydatność krwi do transfuzji.

Uwaga: Osocze może być nieprzezroczyste w przypadku tzw. krwi chylozowej, tj. krew zawierająca dużą ilość tłuszczów obojętnych. Po podgrzaniu krwi chylous do 37 0 C osocze staje się przezroczyste, ale jeśli krew jest zakażona, pozostaje mętna.

Zestawienie zestawu i oznaczenie grupy krwi na podstawie surowic wzorcowych.

Wskazania: konieczność przetoczenia krwi, przygotowanie do zabiegu operacyjnego.

· 2 serie standardowych surowic hemaglutynujących na specjalnych stojakach;

fiolka z izotonicznym roztworem chlorku sodu;

pipeta do pobierania krwi;

pipeta do roztworu izotonicznego;

klepsydra przez 5 minut;

Notatka. Określanie grupy krwi przeprowadza się w pomieszczeniu o dobrym oświetleniu i temperaturze od + 15 0 do +20 0.

Wykonuj manipulacje w rękawiczkach.

W przypadku uszkodzenia skóry pielęgniarka zostaje tymczasowo zawieszona w pracy.

W przypadku kontaktu z krwią na skórze lub błonach śluzowych postępować zgodnie z aktualną instrukcją. (patrz „Aseptyka, antyseptyka”).

1. Sprawdź jakość standardowych surowic hemaglutynujących poprzez:

Wygląd (jasny, przezroczysty);

Obecność prawidłowo zaprojektowanej etykiety wskazującej grupę krwi, miano, datę ważności, miejsce przygotowania.

2. Połóż na stole:

2 zestawy standardowych surowic hemaglutynujących trzech grup (O, A, B) z dwóch serii oraz jedna ampułka z surowicą AB (IV), każda ampułka musi posiadać pipetę;

butelka z roztworem izotonicznym, pipeta;

sterylna oznakowana tabletka;

szkiełka szklane (pręty szklane);

pipeta do pobierania krwi;

3. Wpisz na tablecie pełne imię i nazwisko. pacjent, grupa krwi.

4. Nałożyć jedną kroplę (0,1 ml) standardowych surowic hemaglutynujących z trzech grup po dwie serie do odpowiednich dołków tabletki na tablecie.

5. Na odpowiednią kuwetę nanieść kroplę krwi z palca lub probówki za pomocą pipety.

6. Do każdego dołka płytki, obok surowicy, dodać jedną małą kroplę (0,1 ml) krwi testowej, w proporcji krew:odczynnik 1:10 (pobrać krew z dużej kropli różnymi szklanymi pałeczkami).

7. Wymieszaj krew z odczynnikiem, po wymieszaniu delikatnie potrząśnij płytką w dłoniach.

8. Do kropli surowicy z krwinkami czerwonymi, w których nastąpiła aglutynacja, nie wcześniej niż po 3 minutach dodać jedną kroplę 0,9% roztworu chlorku sodu.

9. Oceń wynik 5 minut po rozpoczęciu reakcji:

· - reakcja aglutynacji może być dodatnia i ujemna;

· - jeżeli surowice dały reakcję dodatnią, wówczas krew zawiera oba aglutynogeny AB, w takim przypadku należy wykonać dodatkowe badanie kontrolne surowicą wzorcową grupy AB (IV).

Oznaczanie grupy krwi za pomocą standardowych surowic:
Przeprowadza się go pod kierunkiem lekarza.
1. Przygotuj: płytki, pipety, szklane pręty, fiolkę z krwią, kulki, alkohol, sera 2 series.
2. Załóż sterylne ubranie.
3. Oddzielnymi pipetkami nakładać serum standardowe wg l-ta kropla do komórek specjalnej płytki w 2 seriach (1, 2, 3 grupy).
4. Szklanym patyczkiem nanieś rozmaz krwi każdej kropli serum.
5. Wymieszaj oddzielnymi szklanymi prętami.
6. Dodaj 1 kroplę soli fizjologicznej do każdej serii.
7. Obserwuj reakcję przez 5 min.
8. Ustawić reakcję z grupą IV, jeśli reakcja aglutynacji wystąpiła we wszystkich 6 komórkach płytki, aby potwierdzić wynik

Oznaczanie grupy krwi za pomocą koliklonów:

1. Ampułki traktować zoliklonami, a ampułki rozpuszczalnikiem z alkoholem.
2. Ampułki otwarte z kolkami anty-A i anty-B oraz 2 ampułki z rozpuszczalnikiem
3. Rozpuszczalnik oddzielnymi pipetami przenieść do ampułek z zoliklonami.
4. Wstrząsnąć kilka razy, zamknąć ampułki (otrzymane odczynniki można przechowywać do 3 miesięcy).
5. Nałóż na miseczkę jedno duże opakowanie Zoliclonu anty-A i anty-B.
6. Nałóż jedną małą kroplę krwi obok kropli tsoliklonu (10 razy mniej).
7. Wymieszaj krew z roztworem Zoliclonu za pomocą oddzielnych szklanych pałeczek.
8. Obserwuj przez 2,5 minuty i oceń reakcję według poniższego schematu:

ZAŁĄCZNIK D

Przygotowanie pacjenta do transfuzji krwi:

1. 2.

3. 4.

5. 6.

7. 8.

1. Określ grupę krwi pacjenta i dawcy.
2. Określ przynależność Rh pacjenta i dawcy.
3. Pobierz krew do ogólnego badania krwi.
4. Weź mocz do ogólnej analizy moczu.
5. Sprawdź ważność krwi w fiolce.
6. Nie jedz na 2 godziny przed transfuzją krwi.
7. Pusty pęcherz moczowy przed transfuzją krwi.
8. Zlicz puls, zmierz ciśnienie krwi i temperaturę ciała.
9. Ustaw urządzenia pod kątem indywidualnej zgodności według grupy krwi i współczynnika Rh.
10. Umieść próbkę biologiczną.

ZAŁĄCZNIK E

PROTOKÓŁ TRANSFUZJI HEMO

(PRÓBKA)

1. Pacjent (imię)

2. Numer historii sprawy __________________

3. Grupa krwi i współczynnik Rh pacjenta __________________________

4. Wskazania do przetoczenia krwi ____________________________________

5. Nazwa komponentu ______________________________________

6. Dane paszportowe składnika: N __________, dawca ________, gr.

krew _______, współczynnik Rh __________, data pobrania ___________

7. Nazwa, numer serii i ilość zawiesiny

rozwiązanie ______________________________

8. Makroocena komponentu ________________________________________

9. Wyniki badania przed transfuzją: grupowanie

krew pacjenta ___________, składnik ___________, reakcja na

Zgodność systemu ABO ___________

10. Czas i sposób podgrzewania czynnika ______________________________

11. Data i godzina transfuzji __________________________

12. Metoda i szybkość transfuzji __________________________________

13. Ilość nalanego podłoża ________________________________________________

14. Stan pacjenta (tętno, ciśnienie, temperatura ciała):

Przed transfuzją ______________________

Podczas transfuzji ____________________

Po transfuzji:

Po upływie 1 godziny __________________________

W 2 godziny __________________________

Po 3 godzinach __________________________

15. Ilość i makroocena pierwszej porcji moczu __________________

ZAŁĄCZNIK E

KWESTIONARIUSZ

Proszę o odpowiedź na kilka pytań.

Zakreśl numer odpowiedzi, która odpowiada Twojej opinii lub wpisz odpowiedź w wolnych wierszach. Imię i nazwisko nie są wymagane. Dane będą wykorzystywane wyłącznie w formie zbiorczej.

1. W jakich wskazaniach najczęściej przetaczasz krew? __________________________________________________________

Identyfikacja oznak niezdatności krwi do transfuzji.

Wskazanie: określenie przydatności krwi do transfuzji.

Sprzęt: fiolka lub pojemnik z krwią.

Sekwencjonowanie:

1. Oceń szczelność paczki:

Opakowanie musi być absolutnie kompletne;

Niedopuszczalne są żadne ślady naruszenia integralności, jeżeli występują, krew nie nadaje się do transfuzji.

2. Oceń prawidłowość certyfikacji:

- obecność etykiety z numerem;

- daty zamówień;

- oznaczenie grupy krwi i przynależności Rh;

- nazwa środka konserwującego;

· - nazwisko i inicjały darczyńcy;

· - nazwa instytucji-producenta;

- podpis lekarza;

· - pieczątka informująca o badaniu na obecność wirusa HIV i wirusowego zapalenia wątroby.

3. Zwróć uwagę na datę ważności krwi, porównaj ją z datą transfuzji, wizualnie oceń krew w fiolce:

Krew należy podzielić na trzy warstwy (poniżej - czerwone erytrocyty, powyżej - wąski szary pasek leukocytów i płytek krwi, powyżej - żółte przezroczyste osocze);

Plazma musi być przezroczysta;

Płatki, błony, skrzepy w osoczu wskazują na infekcję i nienadające się do transfuzji;

Różowe zabarwienie osocza wskazuje na hemolizę erytrocytów i nieprzydatność krwi do transfuzji.

Notatka: Osocze może być nieprzezroczyste w przypadku tzw. krwi chylous, tj. krew zawierająca dużą ilość tłuszczów obojętnych. Po podgrzaniu krwi chylous do 37 0 C osocze staje się przezroczyste, ale jeśli krew jest zakażona, pozostaje mętna.

Zestawienie zestawu i oznaczenie grupy krwi na podstawie surowic wzorcowych.

Wskazania: konieczność transfuzji krwi, przygotowanie do operacji.

Sprzęt:

· 2 serie standardowych surowic hemaglutynujących na specjalnych stojakach;

fiolka z izotonicznym roztworem chlorku sodu;

Oznaczone tabletki

pipeta do pobierania krwi;

pipeta do roztworu izotonicznego;

klepsydra przez 5 minut;

· rękawice.

Notatka. Określanie grupy krwi przeprowadza się w pomieszczeniu o dobrym oświetleniu i temperaturze od + 15 0 do +20 0.

Wykonuj manipulacje w rękawiczkach.

W przypadku uszkodzenia skóry pielęgniarka zostaje tymczasowo zawieszona w pracy.

W przypadku kontaktu z krwią na skórze lub błonach śluzowych postępować zgodnie z aktualną instrukcją. (patrz „Aseptyka, antyseptyka”).

Sekwencjonowanie:

1. Sprawdź jakość standardowych surowic hemaglutynujących poprzez:

oznaczenie kolorem;

Wygląd (jasny, przezroczysty);

konserwacja ampułki;

Obecność prawidłowo zaprojektowanej etykiety wskazującej grupę krwi, miano, datę ważności, miejsce przygotowania.

2. Połóż na stole:

2 zestawy standardowych surowic hemaglutynujących trzech grup (O, A, B) z dwóch serii oraz jedna ampułka z surowicą AB (IV), każda ampułka musi posiadać pipetę;

butelka z roztworem izotonicznym, pipeta;

sterylna oznakowana tabletka;

szkiełka szklane (pręty szklane);

pipeta do pobierania krwi;

· klepsydra.

3. Wpisz na tablecie pełne imię i nazwisko. pacjent, grupa krwi.

4. Nałożyć jedną kroplę (0,1 ml) standardowych surowic hemaglutynujących z trzech grup po dwie serie do odpowiednich dołków tabletki na tablecie.

5. Na odpowiednią kuwetę nanieść kroplę krwi z palca lub probówki za pomocą pipety.

6. Do każdego dołka płytki, obok surowicy, dodać jedną małą kroplę (0,1 ml) krwi testowej, w proporcji krew:odczynnik 1:10 (pobrać krew z dużej kropli różnymi szklanymi pałeczkami).

7. Wymieszaj krew z odczynnikiem, po wymieszaniu delikatnie potrząśnij płytką w dłoniach.

8. Do kropli surowicy z krwinkami czerwonymi, w których nastąpiła aglutynacja, nie wcześniej niż po 3 minutach dodać jedną kroplę 0,9% roztworu chlorku sodu.

9. Oceń wynik 5 minut po rozpoczęciu reakcji:

· - reakcja aglutynacji może być dodatnia i ujemna;

· - jeżeli surowice dały reakcję dodatnią, wówczas krew zawiera oba aglutynogeny AB, w takim przypadku należy wykonać dodatkowe badanie kontrolne surowicą wzorcową grupy AB (IV).

Powiązana informacja:

1. III. Technika pomiaru i wzory obliczeniowe. I. Cele pracy: wyznaczenie przyspieszenia spadku swobodnego przez okres drgań wahadła matematycznego i odwracalnego wahadła fizycznego

W nowoczesna medycyna grupa krwi charakteryzuje zestaw antygenów znajdujących się na powierzchni erytrocytów, które decydują o ich swoistości. Takich antygenów jest ogromna liczba (zwykle stosuje się tabelę grup krwi z różnymi antygenami), ale oznaczenie grupy krwi na ogół przeprowadza się przy użyciu klasyfikacji według współczynnika Rh i systemu AB0.

Zdefiniowanie grupy jest obowiązkową procedurą przygotowującą do jakiejkolwiek operacji. Taka analiza jest konieczna także przy przyjmowaniu do służby w niektórych kontyngentach, m.in. w wojsku, pracownikach organów wewnętrznych i organów ścigania. Interwencja ta przeprowadzana jest ze względu na zwiększone ryzyko wystąpienia stanu zagrożenia życia, w celu skrócenia czasu potrzebnego na udzielenie pomocy w postaci transfuzji krwi.

Skład krwi różnych grup krwi

Istotą układu AB0 jest obecność struktur antygenowych na erytrocytach. W osoczu nie ma odpowiadających im typowych przeciwciał (gamma globulin). Dlatego do badania krwi można zastosować reakcję „antygen + przeciwciało”.

Czerwone krwinki sklejają się, gdy spotykają się antygen i przeciwciało. Reakcja ta nazywana jest hemaglutynacją. Podczas analizy reakcja pojawia się w postaci małych płatków. Badanie opiera się na obrazowaniu aglutynacji surowic.

Antygeny erytrocytów „A” wiążą się odpowiednio z przeciwciałami „ά” oraz „B” z „β”.

Ze względu na skład wyróżnia się następujące grupy krwi:

• I (0) - ά, β - powierzchnia erytrocytów w ogóle nie zawiera antygenów;
• II (A) - β - na powierzchni znajduje się antygen A i przeciwciało β;
• III (B) – ά - powierzchnia zawiera B z przeciwciałem typu ά;
• IV (AB) - 00 - powierzchnia zawiera oba antygeny, ale nie ma przeciwciał.

Zarodek ma już antygeny w stanie zarodka, a aglutyniny (przeciwciała) pojawiają się w pierwszym miesiącu życia.

Metody oznaczania

Metoda standardowa

Technik jest wiele, jednak w laboratorium zazwyczaj wykorzystuje się standardowe surowice.

Do określenia typów antygenów AB0 stosuje się standardową metodę surowic. W składzie standardowej surowicy izohemaglutynującej znajduje się zestaw przeciwciał skierowanych przeciwko cząsteczkom erytrocytów. W obecności antygenu podatnego na działanie przeciwciał tworzy się kompleks antygen-przeciwciało, który uruchamia kaskadę odpowiedzi immunologicznych.

W wyniku tej reakcji dochodzi do aglutynacji erytrocytów, na podstawie charakteru zachodzącej aglutynacji można określić, czy próbka należy do którejkolwiek grupy.

Do przygotowania surowicy standardowej wykorzystuje się krew dawcy i stosuje się pewien system – polegający na wyizolowaniu osocza, w tym przeciwciał, a następnie jego rozcieńczeniu. Rozcieńczanie przeprowadza się za pomocą izotonicznego roztworu chlorku sodu.

Hodowla odbywa się w następujący sposób:

Samo badanie przeprowadza się w następujący sposób:

1. Kroplę każdego serum (o łącznej objętości około 0,1 mililitra) umieszcza się na specjalnej tabletce w miejscu, w którym znajduje się odpowiedni znacznik (używa się 2 próbek, jedna z nich jest kontrolna, druga przeznaczona jest do badań).
2. Następnie obok każdej kropli surowicy umieszcza się próbkę badaną w objętości 0,01 mililitra, po czym oddzielnie miesza się ją z każdym diagnostą.

Zasady dekodowania wyników

Po pięciu minutach możesz ocenić wyniki badania. W dużych kroplach surowicy następuje klarowanie, w niektórych zachodzi reakcja aglutynacji (powstają małe płatki), w innych nie.

Wideo: Oznaczanie grupy krwi i czynnika Rh

Oto możliwe opcje:

• Jeżeli w obu próbkach nie ma reakcji aglutynacji z surowicami II i III (+ kontrola 1 i IV) – definicja grupy pierwszej;
• Jeżeli we wszystkich próbkach z wyjątkiem II obserwuje się krzepnięcie - definicja drugiej;
• W przypadku braku reakcji aglutynacji jedynie w próbce z grupy III – definicja III;
• Jeżeli we wszystkich próbkach, łącznie z kontrolą IV, obserwuje się krzepnięcie – definicja IV.

Gdy surowice są ułożone we właściwej kolejności, a etykiety znajdują się na płytce, nawigacja jest łatwa: grupa odpowiada miejscom bez aglutynacji.

W niektórych przypadkach wiązanie nie jest wyraźnie widoczne. Następnie analizę należy powtórzyć, pod mikroskopem obserwuje się drobną aglutynację.

Metoda reakcji krzyżowych

Istotą tej techniki jest oznaczanie aglutynogenów przy użyciu surowic standardowych lub koleklonów z równoległym oznaczaniem aglutynin przy użyciu erytrocytów referencyjnych.

Technika analizy metodą krzyżową praktycznie nie różni się od badania z użyciem surowic, ale są pewne uzupełnienia.

Do płytki pod surowicami należy dodawać kropla po kropli standardowe erytrocyty. Następnie z probówki pobiera się osocze wraz z krwią pacjenta, która przeszła przez wirówkę, za pomocą pipety, którą umieszcza się na dnie erytrocytów wzorcowych - dodaje do surowicy wzorcowej.

Oprócz techniki metody standardowej, wyniki badania ocenia się kilka minut po rozpoczęciu reakcji. W przypadku reakcji aglutynacji można mówić o obecności aglutynin AB0, w przypadku reakcji plazmowej można sądzić o aglutynogenach.

Wyniki badania krwi przy użyciu standardowych erytrocytów i surowicy:

Obecność aglutynacji w reakcji ze standardowymi surowicami izohemaglutynującymi				Obecność aglutynacji w reakcji ze standardowymi erytrocytami			Grupy krwi
0(ja)	A(II)	B(III)	AB(IV)	0(ja)	A(II)	B(III)
–	–	–	-	–	+	+	0(ja)
+	–	+	-	–	–	+	A(II)
+	+	–	-	–	+	–	B(III)
+	+	+	–	–	–	–	AB(IV)

Aglutynacja;

- brak aglutynacji;

- nie zachodzi żadna reakcja.

Metoda krzyżowa stała się powszechna ze względu na to, że zapobiega błędom diagnostycznym występującym przy stosowaniu metod standardowych.

Oznaczanie grupy krwi za pomocą tsoliklonów

Tsoliklony to syntetyczne substytuty surowicy zawierające sztuczne substytuty aglutynin ά i β. Nazywa się je erytrotestami „Tsoliklon anty-A” (mają różowy kolor), a także „anty-B” (mają Kolor niebieski). Obserwuje się oczekiwaną aglutynację pomiędzy aglutyninami kolklonowymi i erytrocytami krwi.

Ta technika nie wymaga dwóch serii, jest bardziej niezawodny i dokładny. Przeprowadzenie badania i ocena jego wyników przebiega analogicznie jak w metodzie standardowej.

	Rodzaj tsoliklonu		Grupa krwi
Wynik aglutynacji	Anty-A	Anty-B
	-	-	0(ja)
	+	-	A(II)
	-	+	B(III)
	+	+	AB(IV)

Grupę IV (AB) koniecznie potwierdza się aglutynacją z kolokonem anty-AB, a także brakiem aglutynacji erytrocytów w izotonicznym roztworze chlorku sodu.

Metoda ekspresowa z wykorzystaniem zestawu „Erythrotest-Groupcard”

Chociaż ogólnie przyjęte metody określania, czy krew należy do określonej grupy, są powszechne, współczesna medycyna wprowadza metody ekspresowe, z których najczęstszą jest Erythrotest.

Przy ustalaniu grupy metodą „Karta grupowa Erythrotest” wymagany jest zestaw narzędzi, w skład którego wchodzą następujące urządzenia:

• Tabletka z pięcioma dołkami do określenia grupy na podstawie przynależności do Rh i układu AB0;
• Wertykulator przeznaczony do pobierania próbki potrzebnej do badań;
• Pręty szklane do mieszania próbek;
• Czysta pipeta na zestaw roztworów.

Wszystkie te narzędzia są niezbędne do bezbłędnej diagnostyki.

Zestaw do badania krwi Erythrotest-Groupcard pozwala na badanie współczynnika Rh i określenie grupy krwi w każdych warunkach, jest szczególnie skuteczny w przypadku braku możliwości zastosowania metod konwencjonalnych.

W dołkach na płytce znajdują się tsoliclony do antygenów (są to tsoliklony anty-A, -B, -AB) i do antygenu głównego, który określa dziedziczenie czynnika Rh (jest to tsoliklon anty-D). Piąta studzienka zawiera odczynnik kontrolny, który pozwala zapobiec możliwym błędom i prawidłowo określić przynależność do grupy krwi.

Wideo: Oznaczanie grup krwi za pomocą tsoliklonu